ADORA1蛋白；腺苷A1受體(ADORA1)重組蛋白

英文名稱：Recombinant Adenosine A1 Receptor (ADORA1)

RDC7

來源：原核表達

宿主：E.coli

規(guī)格：10μg  50μg  200μg  1mg  5mg

內(nèi)毒素水平： 1.0EU/μg(LAL法測定)具體詳見說明書

片段與標(biāo)簽：N-terminal His Tag

物種來源（人、小鼠、大鼠、豚鼠、兔、獼猴、山羊、綿羊、馬、牛、豬、雞、狗等其他物種多物種）相同的名稱，不同的物種。

性狀：凍干粉

表達系統(tǒng)：  大腸桿菌

產(chǎn)品純度： 95%-98%（SDS-PAGE & RP-HPLC）

保存條件：如果樣品在2-4周內(nèi)使用，可以在4°C低溫儲存。

ADORA1蛋白；腺苷A1受體(ADORA1)重組蛋白有幾個疑點：

1、表達量如何？

2、超聲過程中注意冰水浴了嗎？

3、“蛋白條帶由1條變成3條”是不是說表達后的全菌電泳目標(biāo)蛋白是一條帶，而在超聲或溶菌酶處理后這1條帶降解成了3條？

4、降解成的3條帶中還有原來的融合蛋白條帶嗎，量如何？

5、變性純化后的純度如何？

6、能否把相關(guān)電泳圖發(fā)上來看看？

答：蛋白表達量不高，但也不低；

超聲過程一直是在冰上進行的；

全菌電泳目的蛋白是一條帶；

降解成3條帶后，大部分情況下是有目的融合蛋白的，量比較少；

變性純化后純度還是挺不錯的。

ADORA1蛋白；腺苷A1受體(ADORA1)重組蛋白兩個建議：

1、用非變性純化樣品去做EK酶切、純化。

如果融合蛋白的降解是從N端開始的，而C端沒有降解，那么應(yīng)該能夠拿到38肽。

我曾經(jīng)有個這么個類似情況，酶切后證實是N端降解，C端的目的蛋白好好的，大小都對。

做EK酶切多了，往往會發(fā)現(xiàn)，PET32a的融合段硫氧還蛋白加histag部分確實易被進一步酶切水解。但Ni柱的結(jié)合特性不變，說明水解是從N端開始的。

先做酶切梯度，電泳確定酶量標(biāo)準(zhǔn)。不要用酶說明書的量，有時候差距非常大。和蛋白種類相關(guān)。

酶切后的純化方法選Ni柱穿透純化，可能要加少許咪唑及鹽，以利用酶切后的目標(biāo)蛋白不吸附Ni柱。

2、用變性純化的樣品做復(fù)性處理

ADORA1蛋白；腺苷A1受體(ADORA1)重組蛋白變性純化的樣品純度不錯，查閱一下有關(guān)的復(fù)性方法資料，設(shè)計一個方案。

你用超濾和透析的方法都失敗了，可以考慮用稀釋的方法，控制終蛋白濃度小于0.1mg/ml，蠕動泵滴入攪拌的稀釋液中，pH控制高的，如pH9-10，適當(dāng)加一些甘油和EDTA，DTT。

影響蛋白原核表達的因素很多，如蛋白的親水性、密碼子的稀有性、蛋白毒性等。如疏水性過強，就難以表達；稀有密碼子過多或多個稀有密碼子連在一起也難以表達。我以前也遇到過這種情況，首先要分析你的蛋白序列和二級結(jié)構(gòu)，看看是否存在這些影響因素。如果必須要表達全長蛋白，像你這種情況難度就比較大，可以進行密碼子的改造，或者更換載體，或者更換宿主菌。看你試驗的目的，如果不需要表達全長蛋白，如表達部分抗原性強的片段，可以簡單一點，表達部分片段即可。

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