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不同非洲豬瘟病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法的對(duì)比_91化工儀器網(wǎng)

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放大字體  縮小字體    發(fā)布日期:2019-09-03  來(lái)源:儀器信息網(wǎng)  作者:Mr liao  瀏覽次數(shù):301
核心提示:不同非洲豬瘟病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法的對(duì)比一、簡(jiǎn)介非洲豬瘟(Africann Swine Fever, ASF)是由非洲豬瘟病毒科非洲豬瘟病毒(African Swine Fever Virus,ASFV)感染引起的家豬和野豬的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病1。臨床癥狀與豬瘟極其相似,以高熱、皮膚發(fā)紺、內(nèi)臟器官?lài)?yán)重出血、呼吸障礙和神經(jīng)癥狀為主要特征。本病傳播快、致死率高,對(duì)養(yǎng)豬業(yè)危害巨大,是我國(guó)一類(lèi)動(dòng)物疫病和世界動(dòng)物衛(wèi)生組織(OIE)規(guī)定的必須報(bào)告的動(dòng)物疫病,受到世界各國(guó)的高度重視2。本病是以節(jié)肢動(dòng)物作為傳播

不同非洲豬瘟病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法的對(duì)比

 

一、簡(jiǎn)介

非洲豬瘟(Africann Swine Fever, ASF)是由非洲豬瘟病毒科非洲豬瘟病毒(African Swine Fever Virus,ASFV)感染引起的家豬和野豬的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病1。臨床癥狀與豬瘟極其相似,以高熱、皮膚發(fā)紺、內(nèi)臟器官?lài)?yán)重出血、呼吸障礙和神經(jīng)癥狀為主要特征。本病傳播快、致死率高,對(duì)養(yǎng)豬業(yè)危害巨大,是我國(guó)一類(lèi)動(dòng)物疫病和世界動(dòng)物衛(wèi)生組織(OIE)規(guī)定的必須報(bào)告的動(dòng)物疫病,受到世界各國(guó)的高度重視2。本病是以節(jié)肢動(dòng)物作為傳播媒介的DNA病毒。ASF已在非洲、歐洲和美洲等幾十個(gè)國(guó)家暴發(fā), 三全水餃?zhǔn)录?則將非洲豬瘟直接推向大眾的面前。目前,本病尚無(wú)有效的預(yù)防疫苗和治療藥物,防止疫情擴(kuò)大的有效措施就是撲殺。因此事先建立簡(jiǎn)便、快速、準(zhǔn)確的ASFV檢測(cè)方法顯得十分必要。本文就ASFV實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)的不同方法,進(jìn)行對(duì)比分析。

二、檢測(cè)方法2.1 血清學(xué)檢測(cè)方法

2.1.1酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)

ELISA利用抗原抗體進(jìn)行免疫反應(yīng)的定性和定量檢測(cè),應(yīng)用于血清抗體的檢測(cè),適用于大批量樣品的檢測(cè)。ASFV含有約150種蛋白,目前國(guó)內(nèi)外常用作檢測(cè)抗原的蛋白有VP73、VP72、P54、P32、P30等3。

優(yōu)點(diǎn):快速、方便。

缺點(diǎn):(1)一般情況下, 非洲豬瘟病毒進(jìn)入豬體內(nèi), 7天后才能誘導(dǎo)產(chǎn)生較高的Ig G抗體,而7天的時(shí)候,足以出現(xiàn)早期臨床癥狀,并已經(jīng)傳染給其他家豬,因此該檢測(cè)方法往往具有難以解決的滯后性。(2)針對(duì)不同蛋白會(huì)出現(xiàn)個(gè)別差異,增加排查的難度3。

2.1.2膠體金免疫層析(GICA)試紙條

運(yùn)用雙抗體夾心法原理純化后的抗ASFV單克隆抗體制備金標(biāo)抗體, 應(yīng)用于檢測(cè)ASFV的膠體金免疫層析試紙條,也稱(chēng)為檢測(cè)卡。

優(yōu)點(diǎn):使用方便;

缺點(diǎn):(1)靈敏度低;(2)一般情況下, 非洲豬瘟病毒進(jìn)入豬體內(nèi), 7天后才能誘導(dǎo)產(chǎn)生較高的Ig G抗體,而7天的時(shí)候,足以出現(xiàn)早期臨床癥狀,并已經(jīng)傳染給其他家豬,因此該檢測(cè)方法往往具有難以解決的滯后性3。

2.1.3熒光抗體試驗(yàn)(FAT)

熒光抗體試驗(yàn)(FAT)可用于檢測(cè)野外可疑豬或?qū)嶒?yàn)室接種豬的脾、淋巴結(jié)等組織壓片和冰凍切片中的ASFV抗原。

優(yōu)點(diǎn):敏感性和特異性較佳;

缺點(diǎn):需要專(zhuān)業(yè)試驗(yàn)人員,同時(shí)需要熒光顯微鏡及高質(zhì)量的熒光標(biāo)記抗體。因此僅作為ASFV的輔助檢測(cè)方法4。

2.1.4免疫組化法

該方法用來(lái)檢測(cè)急性感染ASFV豬的扁桃體組織病理學(xué)變化,通過(guò)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),感染ASFV豬有出血、單核細(xì)胞增多現(xiàn)象。免疫組化法對(duì)于臨床癥狀不明顯的病例,確診有一定難度,因此,該方法僅作為ASFV的輔助檢測(cè)方法。

優(yōu)點(diǎn):特異性較佳;

缺點(diǎn):對(duì)于臨床癥狀不明顯的病例,確診有一定難度4。

2.2分子生物學(xué)檢測(cè)方法

2.2.1 PCR

體外擴(kuò)增基因的一種方法,是目前ASFV常用的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法。研究表明,非洲豬瘟感染8小時(shí), 便可從血液中檢測(cè)到其核酸物質(zhì),因此針對(duì)非洲豬瘟病毒保守區(qū)域設(shè)計(jì)引物,對(duì)采集的血液或組織病料等相關(guān)物質(zhì)進(jìn)行DNA提取,進(jìn)行PCR反應(yīng),可對(duì)其進(jìn)行快速準(zhǔn)確診斷。是目前ASFV最常用的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法。眾多國(guó)內(nèi)外研究5-9均建立了ASFV的PCR檢測(cè)方法,表明該方法具有良好的敏感性和特異性,且可以檢測(cè)出極低含量的ASFV,為ASFV早期感染的快速診斷提供了有效的分子生物學(xué)檢測(cè)方法。

優(yōu)點(diǎn):簡(jiǎn)單快速、靈敏度高和特異性強(qiáng)。

2.2.2 熒光定量PCR

通俗講是PCR的升級(jí)版。實(shí)時(shí)熒光定量PCR比常規(guī)PCR具有更高的敏感性和特異性,可同時(shí)快速檢測(cè)大批量樣品,其更加敏感、準(zhǔn)確。舉例,McKillen等10(2010)根據(jù)9GL基因建立了MGB探針實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法,最低可以檢測(cè)到20拷貝標(biāo)準(zhǔn)DNA。

優(yōu)點(diǎn):敏感性和特異性高。

2.2.3 探針雜交技術(shù)

能有效排除PCR檢測(cè)過(guò)程中的非特異性結(jié)果, 省去了瓊脂糖凝膠電泳步驟,操作簡(jiǎn)便、檢測(cè)迅速,在酶標(biāo)板中可批量反應(yīng),為ASFV核酸檢測(cè)方法開(kāi)辟了新的途徑,

該方法的建立難度較高、操作較繁瑣, 對(duì)實(shí)驗(yàn)人員技術(shù)水平要求較高。

三、小結(jié)目前,ASFV的檢測(cè)技術(shù)主要有針對(duì)病毒DNA的核酸檢測(cè)技術(shù)和基于病毒抗原、抗體反應(yīng)的免疫學(xué)技術(shù)兩大類(lèi)。OIE推薦檢測(cè)ASFV的方法主要有PCR、實(shí)時(shí)熒光定量PCR、ELISA等。用免疫學(xué)方法檢測(cè)抗體可以了解ASFV感染、發(fā)生、發(fā)展的進(jìn)程,但抗體只有在病毒感染至一定時(shí)期后才會(huì)出現(xiàn),故ELISA等抗體檢測(cè)方法存在一定的局限性和滯后性。PCR、實(shí)時(shí)熒光定量PCR等分子生物學(xué)技術(shù)在豬感染ASFV的早期即可檢測(cè)到病毒核酸,在ASFV的早期檢測(cè)中具有重要作用??傊珹SFV的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法多種多樣,但若要求檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確、快速、敏感,我們推薦PCR、實(shí)時(shí)熒光定量PCR的方法,這不僅對(duì)感染ASFV的動(dòng)物治療非常重要,而且對(duì)未感染的動(dòng)物及時(shí)采取有效的預(yù)防措施同樣具有重要的意義。隨著免疫學(xué)與分子生物學(xué)技術(shù)的不斷發(fā)展,ASFV的實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法必將不斷完善,進(jìn)一步為我國(guó)開(kāi)展ASF的監(jiān)測(cè)與綜合防控提供技術(shù)支持。

 

 

【參考文獻(xiàn)】

1. 常華, 花群義, 段綱, 項(xiàng)勛, 曾昭文. 非洲豬瘟的研究進(jìn)展. 中國(guó)畜牧獸醫(yī) 2007; 34 (1):116-118.

2. 王君瑋, 張玲, 王志亮, 王華, 包靜月. 非洲豬瘟傳入我國(guó)危害風(fēng)險(xiǎn)分析. 中國(guó)動(dòng)物檢疫 2009; 26 (3):63-66.

3. 常華, 花群義, 段綱. 非洲豬瘟病毒的分子生物學(xué)研究進(jìn)展. 微生物學(xué)通報(bào) 2007; 34 (3):572-575.

4. 莊金秋, 梅建國(guó), 謝金文, 李峰, 沈志強(qiáng). 非洲豬瘟病毒實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法研究進(jìn)展. 飼料與畜牧 2017;  (22).

5. Ag ero M, Fern ndez J, Romero L, S nchez MC, Arias M, S nchezvizca no JM. Highly Sensitive PCR Assay for Routine Diagnosis of African Swine Fever Virus in Clinical Samples. Journal of Clinical Microbiology 2003; 41 (9):4431.

6. 曾少靈, 花群義, 張彩虹, 曹琛福, 秦智鋒, 阮周曦, et al. 非洲豬瘟病毒PCR檢測(cè)方法的建立. 動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展 2009; 30 (10):6-10.

7. Ag ero M, Fern ndez J, Romero LJ, Zamora MJ, S nchez C, Bel k S, et al. A highly sensitive and specific gel-based multiplex RT-PCR assay for the simultaneous and differential diagnosis of African swine fever and Classical swine fever in clinical samples. Veterinary Research 2004; 35 (5):551-563.

8. 非洲豬瘟病毒和古典豬瘟病毒雙重PCR及雙重?zé)晒釶CR檢測(cè)方法的建立與應(yīng)用. 揚(yáng)州大學(xué); 2010.

9. Basto AP, Portugal RS, Nix RJ, Cartaxeiro C, Boinas F, Dixon LK, et al. Development of a nested PCR and its internal control for the detection of African swine fever virus (ASFV) in Ornithodoros erraticus. Archives of Virology 2006; 151 (4):819-826.

10. Mckillen J, Mcmenamy M, Hjertner B, Mcneilly F, Uttenthal , Gallardo C, et al. Sensitive detection of African swine fever virus using real-time PCR with a 5 conjugated minor groove binder probe. Journal of Virological Methods 2010; 168 (1):141-146.

 

(來(lái)源:無(wú)錫百泰克生物技術(shù)有限公司)

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