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蛋白定量技術(shù)_91化工儀器網(wǎng)

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放大字體  縮小字體    發(fā)布日期:2019-09-02  來源:儀器信息網(wǎng)  作者:Mr liao  瀏覽次數(shù):304
核心提示:(一)雙縮脲測(cè)定法1.原理 蛋白質(zhì)中的肽鍵有雙縮脲反應(yīng),在堿性溶液中與二價(jià)銅離子形成藍(lán)紫色的絡(luò)合物,在一定的范圍內(nèi),顏色的深淺與蛋白質(zhì)的含量成正比。此法特異性強(qiáng),游離的氨基酸、小肽和核酸均不產(chǎn)生這種反應(yīng),但此法不夠敏感,僅能測(cè)出毫克水平。 2.試劑配制 硫酸銅(CuSO4 5H2O) 1.50g酒石酸鉀鈉 5.00gH2O 500.0ml 10%氫氧化鈉(不含硫酸鈉) 300mlH2O 加至 1 0

(一)雙縮脲測(cè)定法
1.原理  蛋白質(zhì)中的肽鍵有雙縮脲反應(yīng),在堿性溶液中與二價(jià)銅離子形成藍(lán)紫色的絡(luò)合物,在一定的范圍內(nèi),顏色的深淺與蛋白質(zhì)的含量成正比。此法特異性強(qiáng),游離的氨基酸、小肽和核酸均不產(chǎn)生這種反應(yīng),但此法不夠敏感,僅能測(cè)出毫克水平。
    2.試劑配制
     硫酸銅(CuSO4 5H2O)               1.50g
酒石酸鉀鈉                           5.00g
H2O                                500.0ml  
10%氫氧化鈉(不含硫酸鈉)          300ml
H2O           加至                 1 000ml
此溶液可長期保存,如產(chǎn)生暗紅色沉淀,則應(yīng)廢棄重配。
    3.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
     ⑴ 準(zhǔn)確稱取牛血清白蛋白1.0g(必要時(shí)須首先采用凱氏定氮法測(cè)定牛血清白蛋白制品中實(shí)際純蛋白含量,然后換算),以生理鹽水配成1%的濃度。
⑵ 將1%的牛血清白蛋白按表8-1進(jìn)行稀釋:
表8-1 牛血清白蛋白稀釋方法表
成     分
試            管             號(hào)
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
1%蛋白液(ml)
1.0
.09
0.8
0.7
0.6
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1

蛋白含量(mg)
10
9
8
7
6
5
4
3
2
1

生理鹽水(ml)
0.5
0.6
0.7
0.8
0.9
1.0
1.1
1.2
1.3
1.4
1.5
雙縮脲試劑(ml)
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
4.0
試劑蛋白含量(mg)
8.0
7.2
6.4
5.6
4.8
4.0
3.2
2.4
1.6
0.8
0
注:1%牛血清白蛋白,經(jīng)凱氏定氮測(cè)定含純蛋白為80%。
⑶ 混勻后于室溫放置0.5h~1h,光電比色(540nm),順序由低濃度至高濃度,每管測(cè)3次,求其平均值。
⑷ 以O(shè)D值為縱坐標(biāo),蛋白含量為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
4.樣品測(cè)定
⑴ 取樣品0.1ml,加生理鹽水1.4ml。也可將樣品做1﹕10稀釋加1ml,再加生理鹽水0.5ml。
⑵ 加雙縮脲試劑4.0ml,混勻,至室溫0.5h~1h。
⑶ 另以1.5ml生理鹽水加4.0ml雙縮脲試劑作為空白對(duì)照。
⑷ 測(cè)OD540值。
⑸ 根據(jù)OD值從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出蛋白含量。
注意:各種雙縮脲試劑的配法、加量及室溫靜置時(shí)間均有差異,一旦標(biāo)準(zhǔn)曲線制定后,樣品的測(cè)定則必須與標(biāo)準(zhǔn)曲線制定的條件一致,否則結(jié)果有差異。
(二)紫外光譜吸收法
1.原理  本法根據(jù)蛋白之中的芳香族氨基酸-色氨酸、酪氨酸在紫外光區(qū)的吸收特點(diǎn)而建立的。蛋白質(zhì)在280nm波長附近有一吸收峰,其吸收程度與這些氨基酸的含量成正比。此法靈敏度高,可測(cè)到微克水平,操作簡(jiǎn)單,不需要加各種試劑,測(cè)完后,樣品可回收。
    2.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
    ⑴ 用精密天平稱取牛血清白蛋白50mg,溶于50ml生理鹽水中。
    ⑵ 以生理鹽水再稀釋成每ml含0.1mg、0.2mg、0.3mg、0.4mg 0.9mg,以鹽水對(duì)照。
    ⑶ 測(cè)各管OD280值。
    ⑷ 以O(shè)D280值為縱坐標(biāo),蛋白含量為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
    3.樣品測(cè)定
將待測(cè)樣品以鹽水適當(dāng)稀釋,在0.10mg/ml~1.00mg/ml之間,以生理鹽水為對(duì)照,測(cè)OD280值,從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出蛋白含量。
(三)Folin酚法
    1.原理  蛋白質(zhì)中的酪氨酸與色氨酸和Folin酚試劑中的磷鎢酸、磷鉬酸作用后,在堿性條件下不穩(wěn)定,被還原成藍(lán)色的化合物(鉬藍(lán))。因此通過比色即可測(cè)知標(biāo)本中的蛋白含量。該法的優(yōu)點(diǎn)是操作簡(jiǎn)單、靈敏度高,且不受溶液中脂多糖的干擾。
    2.試劑
    試劑甲:
A液:Na2CO3                 10.00g
      NaOH                   2.00g
      酒石酸鉀鈉(或鉀鹽鈉鹽)0.25g
     混合、溶于500ml蒸餾水中。
B液:CuSO4 5H2O               0.5g
       H2O                 100.00ml
        用前將A液50份與B液1份混合即為試劑甲。
試劑乙:
   于磨口回流瓶加入下列試劑
   Na2WO4 2H2O                100.00g
   NaMoO4 2H2O                 25.00g
   H2O                          700.00ml
   85%H3PO4                      50.00ml
   濃HCl                         100.00ml
按上回流冷凝管以小火回流10h后再加:
   硫酸鋰                       150.00g
   H2O                          50.00ml
   溴水                          數(shù)滴
開口繼續(xù)沸騰15min,驅(qū)除過量的溴,冷卻后溶液呈黃色微帶綠色(如仍呈綠色,須重復(fù)滴加液體溴步驟)。稀釋至1L,過濾,濾液置于棕色瓶保存。使用時(shí)用標(biāo)準(zhǔn)NaOH液滴定,以酚酞為指示劑,然后適當(dāng)稀釋(加水約1倍)使終濃度為1mol/L。
3.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備
⑴ 取標(biāo)準(zhǔn)牛血清白蛋白2.50mg,溶于10ml蒸餾水中,使成250 g/ml。
⑵ 按表8-2稀釋。
表8-2 標(biāo)準(zhǔn)曲線稀釋方法
成分
試          管            號(hào)
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)品(ml)
0
0.2
0.2
0.4
0.1
0.6
0.6
0.8
0.8
1.0
1.0
生理鹽水(ml)
1.0
0.8
0.8
0.6
0.6
0.4
0.4
0.2
0.2
0
0
蛋白含量( g/ml)
0
50
50
100
100
150
150
200
200
250
250
⑶ 每管加試劑甲5ml,混合后室溫放置10min,再加0.50ml試劑乙(即Folin酚試劑),立即搖勻(否則顯色降低)。
⑷ 30min后測(cè)OD650nm。
⑸ 以O(shè)D為縱坐標(biāo),蛋白含量為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
    4.樣品測(cè)定
    ⑴ 待測(cè)樣品1ml(適當(dāng)稀釋至約含25 g-250 g/ml)。
    ⑵ 加試劑甲、乙。
    ⑶ 比色、測(cè)OD650值。
⑷ 查標(biāo)準(zhǔn)曲線,求蛋白含量乘以稀釋倍數(shù),即為樣品的蛋白含量。
(四)紫外分光測(cè)定法
A1%1cm=13.8(IgG)(280nm)
A1%1cm=14.5(IgM)(280nm)
蛋白質(zhì)濃度(mg/ml)=1.45OD280-0.74OD260  (此為經(jīng)驗(yàn)公式,即以不同濃度的蛋白質(zhì)和核酸混合測(cè)定的數(shù)值所建立的)。


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