區(qū)分活細(xì)胞和死亡細(xì)胞的關(guān)鍵在于死亡細(xì)胞膜轉(zhuǎn)運(yùn)功能及膜完整性的喪失。許多陽(yáng)離子染料，如臺(tái)盼藍(lán)、碘化丙錠（PI）、溴化乙錠（EB）以及7-氨基放線菌素D（7-ADD）等，常被用于檢測(cè)細(xì)胞的存活率?；罴?xì)胞由于膜具有完整性而不被著色，死亡細(xì)胞（如壞死細(xì)胞或晚期凋亡細(xì)胞）由于其膜完整性的喪失而被著色。
實(shí)驗(yàn)方法原理   
實(shí)驗(yàn)步驟   
1. 主要試劑的的配制
碘化丙錠（PI）染色液（4℃ 避光保存）：Pl，100 g/ml；TritonX-100，1.0%；NaCl 0.9%。

2. 操作流程
2.1 樣本的準(zhǔn)備

2.1.1 培養(yǎng)細(xì)胞收集懸浮細(xì)胞于 Eppendorf 管中。貼壁細(xì)胞用胰蛋白酶消化后制成單細(xì)胞懸液，1000r/min離心 5 min。

2.1.2 新鮮實(shí)體組織取材組織用 PBS 漂洗干凈后，浸泡在含 PBS 的平皿或青霉素小瓶?jī)?nèi)，用眼科剪盡可能將組織剪碎，吸去上清液，組織塊轉(zhuǎn)入大瓶中加入 10～20 ml 酶（200 g/ml膠原酶），37℃ 消化 30 min，在不銹鋼網(wǎng)上輕輕研磨，使組織和細(xì)胞分離，用 200 目篩網(wǎng)過(guò)濾 2 次。

2.1.3 石蠟切片組織切 50 m 厚切片 4 張，置玻璃試管中，加二甲苯 5 ml，脫蠟 3 5 min，無(wú)水乙醇洗3 5 min，蒸餾水洗 5 min，加 2 ml 0.5% 胃蛋白酶（pH 1.0），振蕩消化 30 min，PBS 洗終止消化，后用 200 目篩網(wǎng)過(guò)濾2次。

2.2 染色方法
制備好的單細(xì)胞懸液可用70% 乙醇固定，4℃ 保存?zhèn)溆?。染色前用PBS稀釋單細(xì)胞，離心沉淀，棄上清，加入 200 l RNA 酶 A，37℃ 水浴30 min，再加入 800 l PI 染色液，混勻，4℃ 避光孵育 30 min。

2.3 上機(jī)檢測(cè)記錄
激發(fā)波長(zhǎng) 488 nm 處紅色熒光。

3. 結(jié)果觀察
細(xì)胞凋亡時(shí)，G1 峰左側(cè)出現(xiàn)亞二倍體細(xì)胞群的峰型。在光散射圖譜上，前向光散射低于正常，側(cè)向光散射高于正常。細(xì)胞壞死時(shí)，細(xì)胞周期中的細(xì)胞均出現(xiàn)不同程度的減少，亞二倍體細(xì)胞量多少不等。在光散射圖譜上，的向光散射和側(cè)向光散射均高于正常。

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