● 儲(chǔ)存條件和效期：
本試劑盒在室溫（25℃左右）干燥條件下，可保存1年；更長(zhǎng)時(shí)間的保存可置于2 8℃。2 8℃保存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，應(yīng)在使用前置于37℃下溶解沉淀至溶液澄清后再使用。單獨(dú)包裝的RNaseA收到后-20℃保存。
 
● 產(chǎn)品簡(jiǎn)介：
本試劑盒采用可以特異性結(jié)合DNA的離心吸附柱和獨(dú)特的緩沖液系統(tǒng)，能提取多種植物細(xì)胞/組織中的基因組DNA。離心吸附柱可以高效、專一吸附DNA，可最大限度去除雜質(zhì)蛋白及細(xì)胞中其他有機(jī)化合物。提取的基因組DNA片段大，純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠。
使用本試劑盒回收的DNA可適用于各種常規(guī)操作，包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern雜交等實(shí)驗(yàn)。
● 提取得率：
1. 準(zhǔn)備液氮；65℃水??；無水乙醇；1.5ml滅菌離心管。
2. 按照標(biāo)簽所示在緩沖液AP3和漂洗液PW中加入無水乙醇，混勻后蓋緊瓶蓋后室溫貯存?zhèn)溆谩?br> 3. 每次使用前請(qǐng)檢查緩沖液AP1，緩沖液AP2和緩沖液AP3是否有沉淀生成，如果出現(xiàn)沉淀，37℃溫浴至沉淀溶解后再使用。
● 操作步驟：
如非指出，所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)在室溫下離心。
1. 取適量植物新鮮組織500mg-1g加入液氮充分研磨，取約100mg粉末置于1.5ml離心管中，加入400 l 緩沖液AP1和6 l RNaseA (10mg/ml)，漩渦震蕩1分鐘。
2. 將離心管放在65℃水浴10分鐘，水浴過程中顛倒離心管以混合樣品數(shù)次。
3. 加入130 l 緩沖液AP2，顛倒混勻，冰浴5分鐘。
4. 12,000rpm離心5分鐘。
注：此步驟離心去除去垢劑，蛋白以及多糖等雜質(zhì)。
5. 取上清（通常為400 l）轉(zhuǎn)移到過濾柱CF中，12,000rpm 離心1分鐘。
6. 將濾出液轉(zhuǎn)移到1.5 ml離心管中，加入1.5倍體積（例如400 l的上清液加600 l緩沖液AP3）緩沖液AP3（使用前請(qǐng)注意是否已經(jīng)加入無水乙醇），立即顛倒混勻，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。
7．吸取步驟6中的混合液加入到吸附柱CG中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm離心1分鐘，倒掉廢液，吸附柱CG放回收集管中。
注：離心吸附柱的最大容積是700 l，如果一次不能完全上柱，可以分次上柱離心，保證全部溶液全部加到離心柱中。
8．向吸附柱CG中加入500 l漂洗液PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm離心1分鐘，倒掉廢液，吸附柱CG放入收集管中。
9．重復(fù)步驟8。
10. 可選步驟：如果離心柱的吸附膜上有顏色，向吸附柱CG中加入500 l無水乙醇，12,000 rpm離心1分鐘，倒掉廢液，吸附柱CG放入收集管中。
11．將吸附柱CG放回廢液收集管中，12,000 rpm離心2分鐘。
注：此步驟非常重要，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除。漂洗液中乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶反應(yīng)（酶切、PCR等）實(shí)驗(yàn)。
12．將吸附柱CG轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的1.5ml離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加50-100 l經(jīng)65℃水浴預(yù)熱的洗脫緩沖液EB，室溫放置2分鐘，12,000 rpm g離心2分鐘。
注；1. 洗脫緩沖液體積最好不少于50 l，體積過小影響回收效率。
2. 洗脫液的pH值對(duì)于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應(yīng)保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)，pH值低于7.0會(huì)降低洗脫效率。
13.  DNA產(chǎn)物-20℃保存。
 
● DNA濃度及純度檢測(cè)：
基因組DNA片段的大小與樣品保存時(shí)間、操作過程中的剪切力等因素有關(guān)。提取的DNA片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)檢測(cè)濃度與純度?？膳渲?.8-1.0％瓊脂糖凝膠，使用 /HindIII判斷基因組的大小，完整的基因組大小應(yīng)在23kb以上。使用分光光度計(jì)檢測(cè)時(shí)， OD260/OD280比值應(yīng)為1.7 1.9之間，如果洗脫時(shí)不使用洗脫緩沖液，而使用去離子水洗脫，比值可能偏低，但并不表明DNA純度不高。